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細胞凍存的操作要點(四)

2021.3.08

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??低溫凍存技巧???

冷凍凝固的過程中,水分會在0℃~-20℃區間形成不同形狀的結晶

在細胞凍存時“降溫速度、冰晶形成量和細胞滲透壓改變程度”是凍存成功與否的重要關鍵。

降溫速度慢:冰晶由細胞外開始形成,造成胞外滲透壓變小,細胞內水份移動至細胞外造成細胞脫水。

降溫速度快:水分流動時間短,細胞內外滲透壓改變程度小,但大量水分留在細胞內造成大量胞內冰晶形成,使得胞器損壞。

這些都可能引起細胞損傷、凋亡或壞死,也可能造成復蘇后細胞存活率低、細胞形態改變、細胞功能喪失、基因變異等現象。

由此可知,最適合的凍存條件為“在增加細胞滲透壓穩定性的溶液中,以慢到能減少胞內冰晶形成,但也足夠快到能預防細胞脫水的降溫速度凍存細胞”。

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慢凍快融

1. 慢凍→兩種辦法:

手動降溫:將細胞依序放在4℃(30分鐘)、-20℃(1小時)、-80℃(過夜)后移至液氮中保存。

程序降溫盒:是一般最廣泛使用的降溫法,為一種特制冷凍容器,使細胞以每分鐘約-1℃的速度降至-80℃(過夜),然后移至液氮中保存。


程序降溫

手動降溫

優點

主動監控溫度

一些控制速率的冷凍機不需要任何可消耗的制冷劑

不需要任何特殊器皿

成本低

要求

受控速率凍結裝置

適當的存儲瓶

專門的冷凍溶液

專門的冷凍溶液

-80℃冷凍機

液氮罐

長時間保存

液氮或低溫儲存(只要低于-135℃即可)

液氮

由此可以看出,程序降溫精準度更高,優于手動降溫。大家可以根據實驗條件選擇不同的凍存方式。

2. 快融

將凍存在液氮中的細胞凍存管快速移至已37℃預熱的水浴鍋中(水面需低于管口,避免水分意外進入凍存管造成潛在污染),使細胞冷凍懸液迅速融化;此做法能讓細胞冷凍懸液快速通過-20℃~0℃這個結晶形成溫度范圍,避免冰晶進入細胞形成再結晶,對細胞造成二次傷害。

FAQ

問 題

建 議

有毒的冷凍保存液

根據制造商的說明使用商業上可獲得的和定義的介質。解凍后立即取出冷凍保護劑。避免細胞在室溫中置于低溫保護介質中。

不適當的冷卻速率

使用-1℃/min的逐漸冷卻速度。要達到這個速度,可以使用保溫的冷凍容器或控制速度的冷凍機。

冷凍后的溫度變化

保持細胞在-130℃后的低溫。運輸時要將細胞放在干冰上,并確保液氮中有充足的液氮。

不當的解凍速率

細胞必須迅速解凍,使用37℃的水浴解凍凍存管。

不正確的細胞密度

根據不同的細胞類型選擇凍存的細胞密度。典型的細胞密度凍存密度是1-10*106cells/ml。

必要的話,要進行細胞最佳凍存密度測試。

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Reference??

1. Ultralow storage temperatures suspend all molecular processes and prevents free radical generation that negatively effects cryopreserved cultures(Baust J., 2007; Baust, Corwin, Van Buskirk, & Baust, 2015).

2.? Mizrahi A, Moore GE, Appl Microbiol. 1970 Jun; 19(6):906-10 Merchant DJ, Hellman KB, Schneider H, Muirhead EE.

3.? Baust J., 2007; Van Buskirk, 2007; Baust, Corwin, Van Buskirk, & Baust, 2015; Allegrucci & Young.

4. Data Acknowledgment: Prof. Shirley H.J. Mei and research team Yuan Tan and Mahmoud Salkhordeh, Regenerative Medicine Program, Ottawa Hosptoal Research Institute(Ottawa, Canada).


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